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Academic Year/course: 2022/23

631 - Master's Degree in Food Quality, Safety and Technology

68758 - Molecular tools in food science


Syllabus Information

Academic Year:
2022/23
Subject:
68758 - Molecular tools in food science
Faculty / School:
105 - Facultad de Veterinaria
Degree:
631 - Master's Degree in Food Quality, Safety and Technology
ECTS:
3.0
Year:
1
Semester:
Second semester
Subject Type:
Optional
Module:
---

1. General information

1.1. Aims of the course

The main objective of this subject is the use and integration of different molecular tools. Therefore, the theoretical and
practical contents have been coordinated. The theoretical classes are aimed to introduce the tools, their bases, advantages
and disadvantages. As a complement, in the practical activities the student becomes familiar with these techniques and
he/she can apply his/her theoretical knowledge for the design of experiments and analysis of results.

These approach and objectives are aligned with the following Sustainable Development Goals (SDGs) of the United Nations 2030 Agenda (https://www.un.org/sustainabledevelopment/es/), in such a way that the acquisition of the learning goals provides training and competence to contribute to some extent to their achievement:
- Goal 2: Zero hunger
- Goal 3: Good health and well-being
- Goal 4: Quality education
- Goal 8: Decent work and economic growth
- Goal 9: Industry, innovation and infrastructure
- Goal 12: Responsible consumption and production

1.2. Context and importance of this course in the degree

This subject is included in the “Master of Food Quality, Technology and Safety” which aims to provide with scientific and
methodological background to deepen in that field. In this sense, we will use important molecular tools in the Biotechnology
field with a promising future in Food Science. Given the multidisciplinary nature of this knowledge, our subject allows to
complement other subjects of the Master, such as "Investigation of microorganisms in foods, water and environment:
traditional and molecular techniques", "Food Enzymology", "Detection and characterization of antimicrobial compounds in
food", “Investigation of moulds and mycotoxins in food”, "Immunochemistry techniques for food quality control" and
"Methodology for the study of bacterial inactivation and survival".

1.3. Recommendations to take this course

It is desirable that the student has prior knowledge of genetics and the use of molecular biology tools. In any case, the
necessary materials will be provided prior to the beginning of the course to allow the student to know the minimum
fundamentals of these techniques.

2. Learning goals

2.1. Competences

By passing the subject, the student will be more competent …
1. To critically interpret and analyze scientific articles related to Molecular Biology in Food Science.
2. To study the physiological changes in the microorganisms in different food environments.
3. To identify the present organisms in food with Molecular Biology techniques.
4. To create mutations in genes of interest in Food Science.
5. To identify the bioethical implications of the use of molecular techniques in food science.
6. To communicate scientific results in this field.

2.2. Learning goals

The student, to pass this subject, will have to demonstrate that:


1. He/she knows and is able to differentiate between different methodologies used in molecular biology for the study of the
bacterial behaviour in different environments of the food science.

2. He/she is able to design a mutation in a bacterial organism of interest in food science.

3. He/she is able to use different computer tools for experiment design and analysis.

4. He/she is able to identify the bioethical aspects about the use of molecular biology tools and techniques in food science.

5. He/she is able to communicate in an oral presentation and a written work the steps for the study of a practical case related
to the subject.

2.3. Importance of learning goals

The acquired knowledge and the tools used in the subject will allow complementing the microbiological, genetic and
molecular formation of the Master students. These matters are acquiring a great importance in Food Science, since they
offer novel, economic and fast solutions to traditional problems. Thus, the students who attend this subject will extend their
qualification to occupy a position in R&D departments or in analytical laboratories of the food industry. In addition, the
acquired tools will complement the research formation necessary for the accomplishment of a Ph.D. in Food Science. This
knowledge will facilitate the acquisition and understanding of the new Molecular Biology techniques arising in the field and
the transference to the Food Science field.

3. Assessment (1st and 2nd call)

3.1. Assessment tasks (description of tasks, marking system and assessment criteria)

The student will have to demonstrate that he/she has reached the expected learning results by these evaluation
activities…
 
ACTIVITY 1. Individual written activity. Design an experimental plan for the study of a practical case introduced by the
lecturer. The application of the used tools in the classes will be needed to accomplish this objective (60% of the final mark).
The accomplishment of this activity will allow proving the achievement of the first four proposed learning results. The
completion of this written work is considered compulsory. The grades will rank from 0 to 10 and will represent 60% of the
final mark of the student in the subject.
 
ACTIVITY 2. Oral presentation of the individual activity in which the student will explain the steps followed during the work,
the obtained results and the possible explanations that can be made depending on the used methodology (40% of the final mark).
The completion of this activity will allow complementing the evaluation of the first four proposed learning results and to prove the acquisition of the fifth learning result. The completion of this written work is considered compulsory. The grades will rank from 0 to 10 and will represent 40% of the final mark of the student in the subject.

Evaluation criteria and demanded requirements
 
EVALUATION ACTIVITY 1 (60%).
Approach to the problem and possible solutions (20%).
Appropriate use of the tools taught in the course (30%).
Bibliography: understanding, interpretation, correct data collection (10%).
 
EVALUATION ACTIVITY 2 (40%):
Exposition ability (organization of the materials, coherence, structure, etc.) (30%)
Discussion of the results (10%)
 
System of qualifications:
 
In accordance with the Regulations Evaluation Standards of Learning at the Universidad de Zaragoza (Agreement of
Governing Council on 22 December 2010), the obtained results by the student will be graded according to the following
numerical scale from 0 to 10, with one decimal, to which corresponding qualitative rating may be added:
 
0 to 4.9: Failed (SS).
5.0 to 6.9: Appropriate (AP).
7.0 to 8.9: Notable (NT).
9.0 to 10: Outstanding (SB).

The mention of "Matricula de Honor" will be awarded among students who have obtained a rating higher than 9.0. Their
number may not exceed five percent of the students enrolled in the course during the corresponding academic year.

4. Methodology, learning tasks, syllabus and resources

4.1. Methodological overview

The course is organized into 5 lectures and 5 practical exercises that will be carried out in the computer room and the
laboratory. In addition, students will prepare and present a research project, for which they will devot 40 hours of autonomous work.
The lectures will introduce the state-of-the-art techniques of Molecular Biology, focusing on their use in Food Science. In
these lectures software tools for data analysis will be introduced.
In the practice sessions, a real-data problem will be presented, and the software taught in the lectures will be needed in order to find its solution. In some cases, the student will have to collect the data by designing and making an experiment.
The basic tools for the accomplishment of these activities will be available in the virtual platform (Anillo Digital Docente:
ADD).

4.2. Learning tasks

The course includes the following learning tasks:
Lectures (15 hours). 5 participative lectures. Attendance is required.
Practice sessions (15 hours). 5 practical exercises that will be carried out in the computer room and in the
laboratory. Attendance is required.
Research project (40 hours). A practical case will be introduced by the lecturer. To solve the case, the student will
have to design synthetic organisms with the tools used in the course. After designing the constructions, the student
will select a specific fluorescent probe to study the case. The student will speculate on the expected results and the
limitations of the techniques. It will be handed in in the form of a written report.
Oral presentation (2 hours). After handing in the written report, the student will defend the research   project with an
oral presentation in the classroom. The evaluation criteria will be the clarity in the presentation, and the organization
of the work. Furthermore, the defense of the project will be evaluated by questions from the rest of the students and
the lecturer. Attendance is required.
Tutorials (3 hours). Attendance is required.

4.3. Syllabus

The course will address the following topics:


Lectures
Topic 1. Introduction (0.45 ECTS: estimated 3 hours)
-Context of the course, historical importance of the new Molecular Biology techniques, advances, new
methodological objectives.
-Basic aspects of Molecular Biology. Genetics: nucleotides, synthesis and structure. Proteomics: translation,
post-translational modifications.


Topic 2. DNA Polymerase Chain Reaction (PCR) (0.45 ECTS: estimated 3 hours)
-DNA structure and synthesis: template, primer, enzyme and other components.
-DNA template: function, types, requirements.
-DNA primer: function, types, requirements.
-Enzyme: function, types, requirements.
-Other components: function, types, requirements.
-New PCR techniques: qPCR-RT.
-PCR applications in Food Science: identification of microorganisms by 16S sequencing (bacteria) or ITS (yeasts
and moulds) identification of adulterations, frauds, etc.


Topic 3. Bioinformatics (0.45 ECTS: estimated 3 hours)
-Databases of public access: Pubmed, Swiss-Prot.
-Tools for analysis of nucleic acid and protein sequences.
-Construction of phylogenetic trees.
-Design of primers for the PCR reaction.

Topic 4. Cloning strategies and generation of mutant organisms (0.45 ECTS: estimated 3 hours)
Concept of gene. Genetic systems. Gene deletion and addition. Tools and reagents. Characteristic as a function of the organism.
Creation of gene reporters. Green Fluorescent Protein (GFP). lac system. Variations. Detection.
Opportunities in the use of mutant organisms in Food Science.

Topic 5. Bioethics. (0.30 ECTS: estimated 2 hours).
-Bioethics concept.
-Stages of ethical analysis
-Economic, social, moral and ecological consequences of genetic improvement
-The future of genomic research

Practice sessions
Practice session 1. Bioinformatics I (0.45 ECTS: estimated 3 hours)
Search and analysis of genomic sequences of different organisms.
Design of DNA primers.
Room: Computers room


Practice session 2. Bioinformatics II (0.45 ECTS: estimated 3 hours)
Practical Case: analysis of microarray experiments. Study of results obtained in a real case of Food Microbiology.
Comparisons with alternative techniques.
Room: Computers room


Practice session 3. Design of PCR experiments (0.45 ECTS: estimated 3 hours)
Practical Case: PCR identification of microorganisms. Design of DNA primers for 16S ribosomal gene. Amplification
of the 16S ribosomal gene. Sample preparation for sequencing.
Room: Computers room and laboratory


Practice session 4. Design of mutant organisms (0.45 ECTS: estimated 3 hours)
Practical case: creation of a specific mutant by an in silico program.
Room: Computers room


Practice session 5. Bioethics (0.30 ECTS: estimated 2 hours)
Projection audiovisual. Discussion of the most important ethical aspects reflected in the audiovisual and
others raised by the teacher, following the stages of ethical analysis.

4.4. Course planning and calendar

The calendar of the lectures and practice sessions is published in the month of September on the website of the Faculty of
Veterinary http://veterinaria.unizar.es/
Submission of the research project: 3 weeks after the end of the lectures and practice sessions. It will be defended in the
Postgraduate Seminar room of the Faculty of Veterinary (Zootechnics Building).
The hours of tutorials will be previously agreed with the lecturer. In addition, not in-person office hours will be available via
virtual platform ADD and e-mail.

4.5. Bibliography and recommended resources

Check at https://biblioteca.unizar.es/


Curso Académico: 2022/23

631 - Máster Universitario en Calidad, Seguridad y Tecnología de los Alimentos

68758 - Herramientas moleculares para la ciencia de los alimentos


Información del Plan Docente

Año académico:
2022/23
Asignatura:
68758 - Herramientas moleculares para la ciencia de los alimentos
Centro académico:
105 - Facultad de Veterinaria
Titulación:
631 - Máster Universitario en Calidad, Seguridad y Tecnología de los Alimentos
Créditos:
3.0
Curso:
1
Periodo de impartición:
Segundo semestre
Clase de asignatura:
Optativa
Materia:
---

1. Información Básica

1.1. Objetivos de la asignatura

El objetivo principal de esta asignatura es el manejo e integración de diferentes herramientas moleculares. Para ello, se ha realizado la coordinación de las clases teóricas y prácticas. Las clases teóricas pretenden introducir las herramientas, su fundamento, sus ventajas y sus desventajas. Como complemento, en las clases prácticas el alumno se familiarizará con estas técnicas y podrá aplicar los conocimientos de las clases teóricas para el diseño de experimentos y análisis de resultados.

 

Estos planteamiento y objetivos están alineados con los siguientes Objetivos de Desarrollo Sostenible (ODS) de la Agenda 2030 de Naciones Unidas (https://www.un.org/sustainabledevelopment/es/), de tal manera que la adquisición de los resultados de aprendizaje de la asignatura proporciona capacitación y competencia para contribuir en cierta medida a su logro:

- Objetivo 2: Hambre cero

- Objetivo 3: Salud y bienestar

- Objetivo 4: Educación de calidad

- Objetivo 8: Trabajo decente y crecimiento económico

- Objetivo 9: Industria, innovación e infraestructuras

- Objetivo 12: Producción y consumo responsables

1.2. Contexto y sentido de la asignatura en la titulación

Esta asignatura se encuadra en el Máster Universitario en Calidad, Seguridad y Tecnología de los Alimentos, que pretende proporcionar bases científicas y metodológicas para profundizar en ese campo. En este sentido, se utilizan herramientas moleculares de gran relieve en el campo de la biotecnología, y con un futuro prometedor en la ciencia de los alimentos.

Dado el carácter transversal de estos conocimientos, esta asignatura permite complementar otras materias del Máster, como "Investigación de microorganismos en alimentos, agua y ambiente: técnicas tradicionales y moleculares", "Enzimología alimentaria", "Detección y valoración de compuestos antimicrobianos en los alimentos", Investigación de mohos y micotoxinas en alimentos, "Técnicas inmunoquímicas aplicadas al control de calidad de los alimentos" o "Metodología para el estudio de la inactivación y supervivencia microbiana".

1.3. Recomendaciones para cursar la asignatura

Es deseable que el estudiante posea conocimientos previos de genética y del uso de herramientas de biología molecular. En cualquier caso, se suministrarán los materiales necesarios previamente al inicio del curso para permitir al estudiante conocer los fundamentos mínimos de estas técnicas.

2. Competencias y resultados de aprendizaje

2.1. Competencias

Al superar la asignatura, el estudiante será más competente para...

 

  1. -   Interpretar y analizar de manera crítica trabajos científicos relacionados con la biología molecular en ciencia y tecnología de los alimentos.
  2. -   Estudiar los cambios fisiológicos producidos en los organismos relacionados con la ciencia y tecnología de los alimentos.
  3. -  Identificar los organismos presentes en los alimentos utilizando técnicas de biología molecular. 4- Crear mutaciones en genes de interés para la ciencia de los alimentos.
  4. -  Identificar las implicaciones bioéticas del uso de las técnicas moleculares en ciencia de los alimentos.
  5. -  Comunicar resultados científicos en este campo de trabajo.

2.2. Resultados de aprendizaje

El estudiante, para superar esta asignatura, deberá demostrar los siguientes resultados...

 

1. Conocer y diferenciar entre diferentes metodologías utilizadas en biología molecular para el estudio de diferentes ámbitos de la ciencia de los alimentos.

2. Diseñar una mutación en un organismo de interés para la industria alimentaria.

3. Utilizar distintas herramientas bioinformáticas necesarias para el diseño y análisis de experimentos.

4. Plantear los aspectos bioéticos sobre el uso de las herramientas y técnicas de biología molecular en ciencia de los alimentos.

5. Expresar en una presentación oral y en un trabajo escrito los pasos necesarios para el estudio de un caso práctico relacionado con la asignatura.

 

2.3. Importancia de los resultados de aprendizaje

Los conocimientos adquiridos y las herramientas utilizadas permitirán completar la formación microbiológica, genética y molecular de los alumnos del Máster. Estas materias están adquiriendo una gran importancia en la ciencia de los alimentos, ya que ofrecen soluciones novedosas, económicas y rápidas a problemas tradicionales. Así, los alumnos que cursen exitosamente esta asignatura ampliarán su capacitación para ocupar un puesto tanto en departamentos de I+D+i como en los laboratorios analíticos de la industria agroalimentaria. Además, las herramientas adquiridas permitirán completar la formación investigadora necesaria para la realización de una Tesis Doctoral en el campo de la ciencia de los alimentos.

Estos conocimientos facilitarán la adquisición y entendimiento de las nuevas técnicas surgidas en el campo de la biología molecular y su transferencia al campo de la ciencia de los alimentos.

3. Evaluación

3.1. Tipo de pruebas y su valor sobre la nota final y criterios de evaluación para cada prueba

El estudiante deberá demostrar que ha alcanzado los resultados de aprendizaje previstos mediante las siguientes actividades de evaluacion

ACTIVIDAD 1. Trabajo escrito individual en el que el alumno deberá diseñar un plan experimental para el estudio de un caso práctico relacionado con la calidad, seguridad y/o tecnología de los alimentos planteado por el estudiante o, en su defecto, por el profesor, para el cual deberá aplicar los conocimientos adquiridos y las herramientas bioinformáticas utilizadas en el desarrollo del curso (60% de la calificación final). Además de justificar el uso de las herramientas empleadas para el plan experimental, el estudiante deberá recoger las consideraciones bioéticas de los resultados esperables. El trabajo se podrá realizar tanto en idioma inglés como español. La extensión final no superará las 10 páginas, con formato Arial 12 y espaciado 1,5 (márgenes superior e inferior de 2,5 cm y derecho e izquierdo de 3 cm).

La superación de esta prueba permitirá acreditar el logro de los cuatro primeros resultados de aprendizaje propuestos. La realización de dicho trabajo escrito se considera obligatoria. La calificación será de 0 a 10 y representará el 60% de la calificación final del estudiante en la asignatura.

ACTIVIDAD 2. Presentación oral del trabajo individual en el que el estudiante explicará los pasos seguidos durante el trabajo, los resultados obtenidos y las posibles explicaciones que pueden realizarse en función de la metodología utilizada (40% de la calificación final).

La superación de esta prueba permitirá completar la evaluación de los cuatro primeros resultados de aprendizaje propuestos y acreditar la adquisición del quinto resultado del aprendizaje. La exposición de dicho trabajo individual se considera obligatoria. La calificación será de 0 a 10 y representará el 40% de la calificación final del estudiante en la asignatura.

 

Criterios de valoración y niveles de exigencia.

ACTIVIDAD DE EVALUACIÓN 1 (60%).

Originalidad del trabajo, planteamiento del problema y posibles soluciones (20%). Uso adecuado de las herramientas y conocimientos adquiridos en el curso (30%). Bibliografía: comprensión, interpretación, búsqueda correcta de datos (10%).

ACTIVIDAD DE EVALUACIÓN 2 (40%).

Capacidad expositiva (organización de los materiales, coherencia, estructura, etc.) (30%) Discusión de los resultados (10%)

 

En ambos casos, las herramientas básicas para la realización de dichas actividades estarán disponibles en el anillo digital docente (ADD).

 

Sistema de calificaciones: de acuerdo con el Reglamento de Normas de Evaluación del Aprendizaje de la Universidad de Zaragoza (Acuerdo de Consejo de Gobierno de 22 de diciembre de 2010), los resultados obtenidos por el alumno se calificarán en función de la siguiente escala numérica de 0 a 10, con expresión de un decimal, a la que podrá añadirse su correspondiente calificación cualitativa:

0-4,9: Suspenso (SS).

5,0-6,9: Aprobado (AP).

7,0-8,9: Notable (NT).

9,0-10: Sobresaliente (SB).

La mención de «Matrícula de Honor» se otorgará entre los estudiantes que hayan obtenido una calificación superior a 9,0. Su número no podrá exceder del cinco por ciento de los estudiantes matriculados en el correspondiente curso académico.

4. Metodología, actividades de aprendizaje, programa y recursos

4.1. Presentación metodológica general

El proceso de aprendizaje que se ha diseñado para esta asignatura se basa en lo siguiente:

 

La asignatura está estructurada en 5 clases magistrales participativas y 5 clases prácticas que se llevarán a cabo tanto en la sala de ordenadores como en el laboratorio. Además se realizará el planteamiento y presentación de un trabajo de investigación. Para estas actividades se precisará de 40 horas de trabajo autónomo por parte del estudiante.

Las clases teóricas se utilizarán para introducir las últimas técnicas de biología molecular, centrando su uso en la ciencia de los alimentos. En estas clases también se introducirán herramientas de software de análisis de los datos obtenidos. En las clases prácticas se planteará un problema, con datos reales, para cuya resolución será necesario uso del software introducido en las clases teóricas. En algunos casos, el alumno deberá obtener dichos datos mediante el diseño y realización de un experimento.

Las herramientas básicas para la realización de dichas actividades estarán disponibles con antelación en el anillo digital docente (ADD).

4.2. Actividades de aprendizaje

  1. Clases teóricas: 5 clases magistrales participativas (15 h totales)
  2. Clases prácticas: 5 clases prácticas que se llevarán a cabo tanto en la sala de ordenadores como en el laboratorio (15 h totales)
  3. Trabajo autónomo. Planteamiento de un caso de estudio por el profesor. Para su resolución, el alumno deberá diseñar organismos sintéticos con las herramientas informáticas utilizadas en clase. Tras el diseño de las construcciones, se seleccionará un marcador específico para el estudio del fenómeno mediante fluorescencia. El alumno especulará sobre los resultados esperables y las limitaciones de las técnicas utilizadas.
  4. Presentación oral. Tras la entrega del trabajo escrito se realizará la presentación oral y defensa del proyecto de investigación en un aula de clase. Los parámetros a evaluar serán la claridad en la presentación y la organización del trabajo. Asimismo, se valorará la defensa del trabajo frente a las preguntas del resto de los alumnos y del profesor.

4.3. Programa

1: Clases teóricas:

Tema 1. Introducción.

Duración estimada: 2 horas presenciales (0,30 ECTS). Contenidos:

-Contexto de la asignatura, importancia de las nuevas técnicas de biología molecular, avances históricos, nuevos objetivos metodológicos.

-Aspectos básicos de biología molecular. Genética: nucleótidos, síntesis y estructura de ácidos nucleicos. Protéomica: traducción, modificaciones post-traduccionales.

Tema 2. Reacción en cadena de la DNA polimerasa (PCR).

Duración estimada: 4 horas presenciales (0,60 ECTS). Contenidos:

-Aspectos históricos de la PCR y síntesis artificial de DNA

-Estructura y síntesis del DNA. Reactivos de síntesis de DNA: molde, cebador, polimerasas y otros componentes.

-DNA molde: función, tipos, requerimientos.

-DNA cebador: función, tipos, requerimientos.

-Enzimas polimerasas: función, tipos, requerimientos.

-Otros componentes: función, tipos, requerimientos.

-Nuevas técnicas de PCR: qPCR-RT.

-Aplicaciones de la PCR en ciencia de los alimentos: identificación de microorganismos, detección de adulteraciones, organismos modificados genéticamente, fraudes, etc.

Tema 3. Bioinformática.

Duración estimada: 3 horas presenciales (0,45 ECTS). Contenidos:

-Bases de datos de acceso público: Pubmed, Swiss-Prot.

-Herramientas de análisis de secuencias de proteinas y ácidos nucleicos.

-Construcción de árboles filogenéticos.

-Diseño de primers para la reacción de la PCR.

Tema 4. Estrategias de clonación y generación de mutantes.

Duración estimada: 5 horas presenciales (0,75 ECTS). Contenidos:

-Concepto de gen.

-Sistemas genéticos celulares.

-Deleción e introducción de genes. Herramientas y reactivos necesarios. Particularidades en función del organismo.

-Creación de reporteros de genes. Proteína Verde Fluorescente (GFP). Gen Detección: bases bioquímicas, microscopía de fluorescencia y citometría de flujo.

-Tecnología CRISPR-Cas9

-Secuenciación masiva de alto rendimiento de DNA.

-Oportunidades en el uso de organismos mutantes en la ciencia de los alimentos.

Tema 5. Bioética.

Duración estimada: 2 horas presenciales (0,30 ECTS). Contenidos:

-Concepto de bioética.

-Etapas del análisis ético.

-Aspectos económicos, sociales, morales y ecológicos de la mejora genética.

-El futuro de la investigación genómica.

2: Clases prácticas

Práctica 1. Bioinformática I.

Duración  estimada:  3  horas  presenciales  (0,45  ECTS).     Espacio necesario: Aula informática. Contenidos:

-Búsqueda y análisis de secuencias genómicas de diferentes organismos.

-Construcción de árboles filogenéticos.

Práctica 2. Bioinformática II.

Duración  estimada:  3  horas  presenciales  (0,45  ECTS).     Espacio necesario: Aula informática. Contenidos:

-Herramienta Basic Local Alignment Search Tool (BLAST).

-Análisis de parámetros de proteínas, y predicciones sobre su plegamiento.

Práctica 3. Bioinformática III.

Duración estimada: 3 horas presenciales (0,45 ECTS). Espacio necesario: Aula informática y laboratorio. Contenidos:

-Diseño de DNA cebadores para aplicaciones específicas: amplificación del promotor o secuencias específicas, detección de microorganismos, modificación del cebador, análisis de los parámetros de los cebadores.

Práctica 4. Diseño de organismos mutantes.

Duración  estimada:  3  horas  presenciales  (0,45  ECTS).     Espacio necesario: Aula informática. Contenidos:

-Caso práctico: creación de un mutante específico mediante herramientas in silico.

Práctica 5. Bioética

Duración  estimada:  2  horas  presenciales  (0,30  ECTS).     Espacio necesario: Aula multimedia. Contenidos:

-Proyección audiovisual. Discusión de los aspectos éticos más importantes reflejados en el audiovisual y otros planteados por el profesor, siguiendo las etapas del análisis ético.

4.4. Planificación de las actividades de aprendizaje y calendario de fechas clave

Calendario de sesiones presenciales y presentación de trabajos

 

El calendario del máster y la programación de las sesiones teóricas y prácticas de la asignatura aparecerán a lo largo del mes de septiembre en la web de la Facultad de Veterinaria, en la siguiente dirección:

http://veterinaria.unizar.es/

 

Presentación del trabajo: 3 semanas después de finalizar las clases teóricas y prácticas.

Las horas de tutoría se acordarán previamente con los profesores que imparten la asignatura. Además, se podrá realizar tutoría no presencial a través del correo electrónico o de la aplicación del ADD.

4.5. Bibliografía y recursos recomendados

La bibliografía del año académico en curso se mantiene actualizada y se consulta por la web de la Biblioteca (buscar bibliografía recomendada en biblioteca.unizar.es).